底层原理:pH值在保留与选择性中的作用机制

流动相pH值可成为控制保留时间和选择性的有力工具,但若控制不当则可能引发问题。调节流动相pH值是实现液相色谱分离的有效手段,本期将重点探讨流动相pH值在保留与选择性中的作用机制。

pH值与保留时间

在反相液相色谱中,保留时间主要取决于分析物的整体疏水性或非极性。极性较强的化合物通常比非极性化合物具有更短的保留时间。因此,典型色谱图的洗脱顺序通常为:从极性化合物到非极性化合物。若样品组分均为中性物质,流动相pH值通常可忽略不计。

图1色谱图即呈现此现象:约3至9分钟洗脱的无标记峰均为中性化合物。值得注意的是,当pH值从7.0(图1a)变为3.0(图1b)时,中性化合物的保留时间未发生改变。

图1:六种中性化合物(约3至9分钟间未标记的峰)与两种羧酸混合物的色谱图模拟结果,分别在(a)pH 7.0和(b)pH 3.0条件下测得。约0.75分钟处的峰为死时间峰。
图1:六种中性化合物(约3至9分钟间未标记的峰)与两种羧酸混合物的色谱图模拟结果,分别在(a)pH 7.0和(b)pH 3.0条件下测得。约0.75分钟处的峰为死时间峰。

当存在可电离分析物时,流动相pH值的改变会导致保留时间发生显著变化。如图1a所示,羧酸组分在pH 7.0条件下高度电离,其负电荷使其比pH 3.0条件下(图1b)的同种分子更具极性。由此可见,pH值对可电离化合物的保留时间具有显著影响。

一般来说,可假设色谱图在两个观测条件间呈现连续变化,且常可安全地将变化趋势外推至观测点之外。在pH 7.0至3.0区间,酸类化合物的保留时间将介于图1a与图1b所示值之间。

酸与碱的保留特性

随着 pH 值的变化,酸和碱的保留特性呈现相反趋势,如图2所示。在图2a中,我们看到酸在低pH值时保留良好,而在高pH值时保留较差,这与我们在图1中的观察结果一致。

碱的情况则恰恰相反(图2b):在高pH值时,碱呈中性状态且保留良好;而在低pH值时,碱发生电离导致保留较差。

图2:(a)酸性样品与(b)碱性样品的保留能力与流动相pH值关系曲线图。这些曲线图虽未直接对应任何示例色谱图,但清晰展现了酸碱物质在pH值变化时的一般保留行为。
图2:(a)酸性样品与(b)碱性样品的保留能力与流动相pH值关系曲线图。这些曲线图虽未直接对应任何示例色谱图,但清晰展现了酸碱物质在pH值变化时的一般保留行为。

这些曲线的中点即为酸或碱的pKa值,此时半数分子处于电离状态,另一半则未电离。需注意:尽管pKa点同时存在电离态与非电离态物质,色谱图中仅呈现单一峰形。这是因为两种形态间的平衡速率远快于样品通过色谱柱所需时间,导致分析物在色谱行为上表现为存在分子的平均态。

当pH值向酸性方向偏移时,未电离态分子占比增加而电离态分子减少,导致酸的整体极性降低,保留时间随之延长(如图2a所示向左移动)。碱类物质对pH变化的响应则相反。

尽管在pKa值上下约1个pH单位范围内电离变化显著,但当pH值偏离pKa值2个pH单位以上时,曲线两端均趋于平缓。通常认为当pH值偏离pKa值2个单位时,酸或碱已完全电离或完全抑制电离。因此流动相pH值变化的影响取决于其与目标化合物pKa值的相对关系。这意味着若需通过pH调节保留时间,在pKa值±(1-1.5) pH单位范围内效果最佳。反之,为获得最稳定的保留条件,流动相pH值应与化合物pKa值保持>1.5 pH单位的距离。

pH的选择性力量

在含酸或碱样品的方法开发过程中,优化流动相pH值的真正魅力在于:不同化合物(尤其是pKa值相异者)的pH值与保留响应曲线存在显著差异。实际应用中,这意味着通过改变流动相pH值可获得显著的保留时间变化和峰间距变化。

图3展示了四种取代苯胺的分离实例,既体现了这一特性,也进一步阐释了图2b中碱类物质的普遍保留行为。图3a中各峰均标注编号,图3所有峰均采用颜色编码以便峰位追踪。需注意这些化合物的pKa值范围为2.66至3.98。

上述讨论表明,在pKa值±1.5 pH单位范围内最能有效改变保留特性,因此预期峰位移动最显著的pH范围应为(2.66–1.5)=1.1至(3.98+1.5)=5.5。图3展示了2 ≤ pH ≤ 5.5条件下的模拟色谱图;pH < 2可能导致色谱柱损伤,而pH > 5.5时这些分析物的色谱峰几乎与pH 5.5时无差异。

图3:四种取代苯胺在图示pH值下的模拟色谱图。色谱柱类型:StableBond CN色谱柱(安捷伦);流动相:缓冲液-甲醇(25:75);缓冲液:25 mM柠檬酸钠(pH≥4.0)或磷酸钾(pH<4.0);流速:1 mL/min;温度:35 °C。约1.7分钟处的峰为死时间。
图3:四种取代苯胺在图示pH值下的模拟色谱图。色谱柱类型:StableBond CN色谱柱(安捷伦);流动相:缓冲液-甲醇(25:75);缓冲液:25 mM柠檬酸钠(pH≥4.0)或磷酸钾(pH<4.0);流速:1 mL/min;温度:35 °C。约1.7分钟处的峰为死时间。

让我们检查各峰的移动轨迹,观察它们如何受pH值影响。峰4(黑色)的pKa值为2.66,在pH 2.0时将发生电离,因此在此pH值下保留能力最低。当pH值升至2.5以上时,非电离物质占主导地位,保留能力随之增加,这符合预期。

当pH值达到4.0(即pKa值上方约1.5个pH单位)时,电离作用受到抑制(如图2b右侧平坦区域所示),在pH 4.0–5.5的色谱图中几乎不再观察到保留时间的变化。峰3(橙色)具有相近的pKa值(2.75),因此峰3和峰4表现出高度相似的行为特征,在pH 4.0以上均保持稳定保留。尽管这两个峰的保留时间随pH变化,但选择性因子α仅发生微小变化(α值范围为1.36–1.40),故在所有显示的pH值下均能良好分离。(注:α为相邻两峰保留因子k的比值,本例中α=k4/k3)

峰1(绿色,pKa=3.98)与峰2(红色,pKa=3.52)的保留规律类似。随着pH值升高导致电离程度降低,这两峰同样向更高保留时间迁移。然而,由于峰1和峰2的pKa值比峰3和峰4高约1个pH单位,其保留时间直至pH值升高约1个单位(即pH 5.0及以上)才趋于稳定。遗憾的是,峰1与峰2之间的选择性随pH值升高而下降——从pH 2.0时的α=1.64降至pH 5.5时的1.05,因此分离效果随pH值增加而恶化。

流动相pH值与稳健性

从色谱角度而言,这意味着需确定色谱变量可调整的范围,在此范围内仍能提供合格的分析结果。当前背景下,这要求通过稳健性实验确定流动相pH值可变范围仍能保持充分分离的极限值。

图4所示胆汁酸样品色谱图(4)展示了pH耐受性差的方法实例。在图4a中,流动相pH值为5.1时所有峰均实现基线分离。然而当pH值调整至5.2(图4b)时,最后两个峰合并为分离不良的双峰(箭头所示)。使用pH计调节溶液pH值时,常规实验室误差通常为±0.05-0.1 pH单位。当通过滴定调节缓冲液pH值时,不同批次缓冲液制备产生的差异(如图4a与4b所示)并不意外。因此,若规定流动相pH值为5.1,分离效果将缺乏足够的稳健性。

图4:基于文献3数据模拟的胆汁酸样品分离结果。流动相pH值:(a) 5.1,(b) 5.2。
图4:基于文献3数据模拟的胆汁酸样品分离结果。流动相pH值:(a) 5.1,(b) 5.2。

让我们探讨如何为图3所示样品建立具有可接受稳健性的满意分离条件。通常我们期望等度保留因子k值在2-10之间,但若无法达到该范围,1-20的范围通常也可接受。同时需明确要求峰间基线分辨率。此外,我们期望方法能尽可能耐受pH值变化。

图2a中pH 2.0的分离效果良好,但前两个峰的k值均小于1,这意味着在实际样品分析时,色谱柱死时间t0存在干扰风险。在pH 2.5条件下(图2b),首峰k值约为1且分离充分,故该pH值可接受。在pH 3.0条件下(图2c),峰2已部分越过峰3,分离效果不足。pH 2.75条件下(色谱图未展示),峰3刚好与基线分离于峰2之后,此值约为最大可接受pH值;所有更高pH值条件下均出现峰重叠现象。

鉴于2.0 ≤ pH ≤ 2.75范围内均能获得可接受分离度,我们可将默认pH值设定于该区间中点(例如pH 2.35)。在方法验证阶段,可分别在pH 2.05和2.65条件下进行实验。若这些条件能满足分离要求(及其他方法性能要求),则可将方法pH值定义为2.35,并允许±0.3pH单位的调节范围。方法文件中明确此规则后,分析人员即可通过±0.3pH单位的调节实现系统适用性。

为确保流动相稳定性,我们在流动相中添加缓冲液。缓冲液在距其pKa值±1 pH单位范围内效果最佳。磷酸盐具有三个pKa值(2.1、7.2和12.3),因此适用于pH 2.35 ± 0.3的范围。相比之下,醋酸盐的pKa值为4.8,不适合作为图3样品的缓冲剂。

另一方面,若需在pH 5.1条件下运行图4所示方法,则应选用乙酸盐而非磷酸盐作为缓冲剂。大多数液相色谱方法通常采用20-30 mM的缓冲浓度,但使用当今高纯度硅胶色谱柱时,5-10 mM的低浓度亦可满足要求。

总结

流动相pH值对中性化合物的保留影响甚微,但若样品中存在可电离化合物,则需控制pH值以稳定保留特性。在方法开发阶段,流动相pH值可成为调整色谱图峰形和位置的高效工具;

但反之,在常规分析中需严格控制pH值以维持稳定的分离条件。选择缓冲液调控流动相pH时,务必选用 pKa 值与目标 pH 值相差不超过1个pH单位的缓冲液,否则其缓冲能力可能不足以稳定保留。